近年來(lái),重組蛋白被應(yīng)用于不同疾病治療,其中單克隆抗體(mAbs)是生物治療類重組蛋白里發(fā)展最快的一類。CHO細(xì)胞是生產(chǎn)這些重組蛋白應(yīng)用最廣泛的細(xì)胞株,表達(dá)載體決定重組蛋白的表達(dá)量和質(zhì)量。目前,關(guān)于CHO細(xì)胞中表達(dá)載體的構(gòu)建策略已經(jīng)建立,包括:?jiǎn)雾樂(lè)醋虞d體,多啟動(dòng)子表達(dá)載體,以及IRES(內(nèi)部核糖體進(jìn)入位點(diǎn))或Furin-2A(弗林蛋白酶-2A多肽)元件介導(dǎo)的三順?lè)醋虞d體。其中,F(xiàn)urin-2A介導(dǎo)的載體非常有效,優(yōu)勢(shì)表現(xiàn)在自我剪切效率高,同一個(gè)開(kāi)放閱讀框相同的輕重鏈表達(dá)量。本篇文章綜述了這幾種CHO細(xì)胞重組單克隆抗體表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建策略的發(fā)展歷程及其優(yōu)缺點(diǎn)。 隨著基因工程的發(fā)展,重組治療性蛋白的需求也大幅增加[1,2]。作為一種重要重組蛋白,治療性mAbs具有特異性和低免疫原性。近幾年來(lái),重組mAbs已經(jīng)成為包括癌癥及免疫系統(tǒng)缺陷在內(nèi)的許多疾病治療的主導(dǎo)藥物[3,4]。至今為止,F(xiàn)DA(美國(guó)食品藥品管理局)和EMA(歐洲藥品管理局)已經(jīng)批準(zhǔn)超過(guò)70種治療性mAbs,其中39種是由CHO細(xì)胞生產(chǎn)(見(jiàn)表1),除此之外,還有幾百種mAbs處于臨床階段[5]。 重組mAbs,或稱基因改造抗體通過(guò)轉(zhuǎn)基因技術(shù)在多種宿主細(xì)胞表達(dá)。免疫球蛋白GmAbs(IgGmAbs)包括兩條相同的輕鏈和兩條相同的重鏈。重組mAbs需要折疊、組裝及合適地糖基化才具有生物學(xué)活性[6]。不同宿主細(xì)胞產(chǎn)生的治療性mAbs顯示不同的免疫原性和治療效果,暗示宿主細(xì)胞影響重組mAbs的生物學(xué)功能[4]。大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)是一種簡(jiǎn)單的系統(tǒng),其轉(zhuǎn)錄后修飾比較少而且不常見(jiàn),導(dǎo)致這種系統(tǒng)只適合表達(dá)抗體片段或者是單鏈抗體[7,8]。昆蟲(chóng)細(xì)胞、酵母細(xì)胞和轉(zhuǎn)基因植物轉(zhuǎn)錄后修飾和人細(xì)胞不同,導(dǎo)致重組mAbs和人天然mAbs有很大差異[9]。對(duì)比其他系統(tǒng),哺乳動(dòng)物細(xì)胞產(chǎn)生的治療性重組蛋白具有正確的轉(zhuǎn)錄后修飾,相似的分子結(jié)構(gòu)和糖基化,和人體內(nèi)抗體相接近[10]。因此,除了一些抗體片段,目前市場(chǎng)上的大多數(shù)治療性mAbs使用哺乳細(xì)胞生產(chǎn)[11-13],并且更傾向于使用CHO細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)。表達(dá)載體是CHO細(xì)胞表達(dá)不同重組蛋白的關(guān)鍵因素,并且決定了mAbs的產(chǎn)量和質(zhì)量[14]。本篇文章,詳述了使用CHO細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)生產(chǎn)mAbs的表達(dá)載體構(gòu)建最新進(jìn)展。 治療性重組mAbs需要合適的糖基化和其他翻譯后修飾來(lái)實(shí)現(xiàn)其生物功能,因此,大多數(shù)治療性重組mAbs使用哺乳細(xì)胞來(lái)生產(chǎn),CHO系統(tǒng)最常被用作表達(dá)系統(tǒng)[15]。對(duì)比其他的表達(dá)系統(tǒng),CHO細(xì)胞具有以下優(yōu)勢(shì):(1)更適合懸浮培養(yǎng),更符合工業(yè)大規(guī)模生產(chǎn)的需求[16],(2)生產(chǎn)的mAbs更貼近天然mAbs的結(jié)構(gòu)和功能,(3)在這些細(xì)胞中人源病毒不能感染和擴(kuò)增[17],(4)外源基因可以穩(wěn)定地整合到CHO細(xì)胞中,(5)分泌低量的內(nèi)源蛋白,有利于目的重組mAbs的分離純化[10]。當(dāng)在CHO細(xì)胞中表達(dá)治療性重組mAbs,HC和LC基因需要同時(shí)翻譯,這點(diǎn)連同細(xì)胞系的成功轉(zhuǎn)染都是CHO細(xì)胞生產(chǎn)mAbs時(shí)面臨的重大挑戰(zhàn)。 單順?lè)醋虞d體 最近幾年,CHO細(xì)胞表達(dá)mAbs的表達(dá)載體的不同構(gòu)建策略已經(jīng)建立(表2)。早期的研究集中在使用獨(dú)立的載體和表達(dá)輕鏈或者重鏈序列(圖1a)[18,19]。但是,這種策略耗時(shí)且困難,準(zhǔn)備和高效共轉(zhuǎn)兩個(gè)載體是個(gè)挑戰(zhàn),不僅如此,使用兩種篩選標(biāo)記降低了獲得穩(wěn)定細(xì)胞克隆的效率[20,21],另外,這種低效地將兩種篩選標(biāo)記及目的基因整合進(jìn)細(xì)胞基因組DNA影響輕重鏈基因的表達(dá)。相較而言,瞬時(shí)表達(dá)使得在哺乳細(xì)胞中分析蛋白表達(dá)更高效[22]。單順?lè)醋虞d體瞬時(shí)轉(zhuǎn)染用于早期抗體分子的篩選,但是其表達(dá)量較雙啟動(dòng)子及雙順?lè)醋虞d體的表達(dá)量要低[5]。這種可能歸因于這種單順?lè)醋虞d體系統(tǒng)每個(gè)多肽鏈?zhǔn)怯筛髯元?dú)立的啟動(dòng)子介導(dǎo),輕鏈由于分子量較重鏈低在轉(zhuǎn)錄和翻譯上效率更高[23,24]。單順?lè)醋酉到y(tǒng)的這些不足不僅增加了工作量,而且不適合大規(guī)模mAbs生產(chǎn)[25,26]。因此構(gòu)建多順?lè)醋淤|(zhì)粒來(lái)實(shí)現(xiàn)輕重鏈及篩選基因在同一個(gè)載體上是非常有必要的。 多啟動(dòng)子表達(dá)載體 一個(gè)多啟動(dòng)子的mAb的表達(dá)載體具備不同啟動(dòng)子來(lái)分別介導(dǎo)輕重鏈基因的轉(zhuǎn)錄(圖1b)。目前,CHO細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)中應(yīng)用的啟動(dòng)子主要來(lái)源于猿猴空泡病毒40(SV40)、延伸因子-1α(EF-1α)和巨細(xì)胞病毒(CMV)。當(dāng)然EF-1α是最強(qiáng)啟動(dòng)子[27](表2)。Bayat等構(gòu)建了使用CMV啟動(dòng)子的單順?lè)醋虞d體、雙載體和雙順?lè)醋?,用其表達(dá)重組的mAbs,發(fā)現(xiàn)使用雙啟動(dòng)子表達(dá)的蛋白產(chǎn)量最高[5]。但是因?yàn)樵谝粋€(gè)多啟動(dòng)子的載體上每個(gè)啟動(dòng)子負(fù)責(zé)一個(gè)基因的轉(zhuǎn)錄,這可能導(dǎo)致基因表達(dá)水平的不均衡[28]。以mAbs為例,這將導(dǎo)致輕重鏈的表達(dá)水平不一致,從而造成兩個(gè)啟動(dòng)子間的相互干擾或抑制。另外,在許多情況下,多啟動(dòng)子載體的能力有限,很難適合兩個(gè)以上的轉(zhuǎn)錄盒。因此這種方法的適用有限。 三順?lè)醋虞d體 三順?lè)醋虞d體在一條mRNA上表達(dá)輕重鏈及篩選標(biāo)記基因,允許三種基因同時(shí)表達(dá),并且將上述使用傳統(tǒng)載體的表達(dá)問(wèn)題降低到最低。三順?lè)醋虞d體的輕重鏈表達(dá)水平相同,這使得mAb的表達(dá)水平提高、聚集率低和糖基化一致。兩種三順?lè)醋虞d體,一種利用IRES,另一種利用Furin-2A。 圖1:?jiǎn)慰寺】贵w表達(dá)載體構(gòu)建示意圖 A:?jiǎn)雾樂(lè)醋虞d體,B:多啟動(dòng)子載體表達(dá)系統(tǒng),C:IRES介導(dǎo)的載體,D:Furin-2A介導(dǎo)的載體。GOI:插入基因,PolyA:聚腺苷酸化信號(hào),IRES:核糖體內(nèi)部進(jìn)入位點(diǎn),F(xiàn)2A:Furin-2A。 IRES介導(dǎo)的載體 IRES是一段幾百堿基的非編碼序列,定位于一些病毒基因組中,通常在RNA病毒的5’非編碼端。IRES可以介導(dǎo)一種不依賴5’帽子結(jié)構(gòu)的翻譯起始,可以促使單一mRNA轉(zhuǎn)錄本上多種基因的表達(dá)[28]。在翻譯過(guò)程中,IRES元件促進(jìn)非依賴帽子結(jié)構(gòu)的起始和IRES元件下游基因的翻譯[29]。在這種策略中,IRES元件插入在輕重鏈閱讀框的中間,整個(gè)序列包含重鏈、IRES和輕鏈在內(nèi)都由一個(gè)啟動(dòng)子介導(dǎo)轉(zhuǎn)錄(圖1c)。在翻譯階段,第一個(gè)開(kāi)放閱讀框由帽子結(jié)構(gòu)機(jī)制介導(dǎo)翻譯,在IRES下游的第二個(gè)閱讀框則一種不依賴帽子結(jié)構(gòu)的機(jī)制進(jìn)行[28,30,31],因此,達(dá)到了一個(gè)啟動(dòng)子表達(dá)完整重組蛋白的設(shè)想。 IRES的使用克服了單順?lè)醋虞d體和多啟動(dòng)子表達(dá)載體出現(xiàn)的不同啟動(dòng)子中間相互干預(yù)的問(wèn)題[32]。單順?lè)醋虞d體系統(tǒng)中目的蛋白和篩選標(biāo)記基因處于不同啟動(dòng)子控制下,造成得到表達(dá)全部基因的克隆的概率很低[33,34]。本系統(tǒng)中,篩選基因同樣使用IRES元件連接,因此輕重鏈及篩選基因可以在同一個(gè)轉(zhuǎn)錄本表達(dá),從而增加陽(yáng)性克隆的概率[18,28]。另外,三順?lè)醋右惨蛟撓到y(tǒng)輕重鏈表達(dá)水平一致而降低了mAbs的產(chǎn)量[28]。例如,抗腫瘤壞死因子α的mAbs,由CHO細(xì)胞IRES介導(dǎo)的三順?lè)醋酉到y(tǒng)表達(dá),抗體的產(chǎn)量要比雙質(zhì)粒系統(tǒng)顯著性提高[35]。但是,Hennecke等發(fā)現(xiàn)非帽子結(jié)構(gòu)依賴的翻譯效率要比帽子結(jié)構(gòu)依賴型效率低[36],因此,盡管所有基因處于同一條轉(zhuǎn)錄的mRNA,它們的翻譯水平也存在差異。因此,目的基因排序設(shè)計(jì)對(duì)于構(gòu)建mAb的表達(dá)載體尤為重要[37]。 Furin-2A介導(dǎo)的載體 2A多肽一種自剪切多肽,首次發(fā)現(xiàn)于核糖核酸病毒,主要包括四類,分別來(lái)源于手足口病毒(F2A)、馬鼻病毒(E2A)、1型豬腸病毒(P2A)和昆蟲(chóng)病毒(T2A)。這種2A序列遠(yuǎn)小于IRES,只有約20個(gè)氨基酸。輕重鏈間插入2A序列,通過(guò)在2A序列的C端最后兩個(gè)氨基酸GP間共轉(zhuǎn)錄剪切,產(chǎn)生獨(dú)立的輕重鏈,增加了共表達(dá)蛋白的產(chǎn)量(圖1d)[37,38]。2A介導(dǎo)的自剪切機(jī)制會(huì)在核糖體上跳過(guò)2A序列C端甘氨酰-脯氨酰的形成[39,40]。 之前的研究表明在2A序列前添加Furin序列可以在剪切后除去多余的氨基酸[41,42]。Furin-2A介導(dǎo)的載體表達(dá)mAbs表達(dá)量要比IRES介導(dǎo)的載體高,不管其瞬轉(zhuǎn)還是穩(wěn)轉(zhuǎn)[18,42]。另外,F(xiàn)2A序列的上游基因翻譯效率要比下游高[18],因此重鏈輕鏈在F2A序列兩側(cè)的安排影響mAb的產(chǎn)量。高的輕鏈表達(dá)量發(fā)現(xiàn)與高細(xì)胞活率、高mAb產(chǎn)量和低聚集相關(guān)[23]。構(gòu)建多順?lè)醋虞d體時(shí)組合2A和IRES序列會(huì)提高效率[30],但是仍存在很多挑戰(zhàn),首先,F(xiàn)urin-2A自剪切不完全(85-95%),這會(huì)降低效率。另外,2A多肽的C端可能影響蛋白的功能和定位[26]。 多種應(yīng)用于重組mAbs表達(dá)載體的構(gòu)建策略已經(jīng)建立,一系列的載體已經(jīng)產(chǎn)生,例如單順?lè)醋虞d體、多啟動(dòng)子載體以及IRES或Fruin-2A介導(dǎo)的三順?lè)醋虞d體。這些載體都有自身的優(yōu)缺點(diǎn)。其中,F(xiàn)urin-2A介導(dǎo)的載體呈現(xiàn)出最有效的表達(dá)載體,突出優(yōu)勢(shì)是具有高自剪切效率和相等量的輕重鏈表達(dá)量。在未來(lái),我們認(rèn)為未來(lái)的研究需要集中在使用順式元件增加重組mAb的表達(dá)。另外,提高Furin-2A介導(dǎo)的載體的自剪切能力也將是保證輕重鏈蛋白的準(zhǔn)確且相同表達(dá)量的優(yōu)勢(shì)。 參考文獻(xiàn): Li YM, Tian ZW, Xu DH, Wang XY, Wang TY.Construction strategies for developing expression vectors for recombinant monoclonal antibodyproduction in CHO cells.Mol Biol Rep. 2018 Dec;45(6):2907-2912. 會(huì)議推薦 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