今天，我們就給大家分享下 RNA 分離技巧，特別是最大限度地回收高質(zhì)量、無 DNA 的 RNA 的實踐經(jīng)驗。

RNA 是不穩(wěn)定的，極易降解。許多樣品含有高水平的 RNase，會快速降解 RNA。為了使之最小化，最好在采集時穩(wěn)定樣本中的 RNA。常用的樣品穩(wěn)定方法包括液氮快速冷凍、干冰乙醇浴或 -80 °C 冷凍室。然而，這些方法也有缺點，如核酸的凍融損傷。

在 RNA 提取過程中，提高 RNA 產(chǎn)量和質(zhì)量的最佳方法是保證樣品完全裂解。然而，并不是所有的樣本都對相同的裂解方案敏感。例如，血細胞（如淋巴細胞、PBMCs 等）和微生物細胞往往很難有效溶解，僅僅添加基于洗滌劑的裂解緩沖液可能并不夠。

為了提高裂解效果，可以將裂解緩沖液與機械裂解步驟（研磨珠破碎）匹配，或者在裂解液上游加入酶裂解步驟（如蛋白酶 K、溶菌酶等）（圖 1）。

DNA 的存在會使基于 UV/VIS 的定量方法（如 Nanodrop）發(fā)生偏差，從而人為地提高 RNA 的定量，使其高于實際水平。

此外，在更敏感的下游應用（例如 RNA-seq）中，它還可能導致錯誤讀數(shù)。這可以通過多種方法實現(xiàn)（例如 TRIzol^? 相分離、DNA 去除柱和 DNase 處理）。

確認 DNA 的存在的最快方法是使 RNA 樣本可視化（如瓊脂糖凝膠，AgilentTapeStation^? 等等）, 尋找 28S 核糖體 RNA 帶上方的任何高分子量片段（圖 2）。其他方法 , 如 qPCR 或 Qubit 也可以使用，如果您正在執(zhí)行對 DNA 污染敏感的下游應用，則更可取。

Zymo Research 開發(fā)了一種新型的 RNA 提取試劑盒，該試劑盒具有新的緩沖液和離心柱體系，可以結(jié)合和提取 RNA，同時消除污染的 DNA。RNA 分離試劑盒包括用于柱上處理的 DNase I。

這消除了提取后 DNA 酶處理和清理步驟的需要，并簡化了從提取到下游應用的過程。下面的圖 3 說明了基于 PCR 缺乏 DNA 擴增，ZYMO 柱對 Dnase 處理是有效的。

針對不同類型樣本推薦的 RNA 產(chǎn)品：

本方法無需傳統(tǒng) TRIZOL 提取方法的相分離，而且不需要使用任何有毒有害的試劑（例如氯仿），7 分鐘就可完成整個操作步驟并且可以提取到含 microRNA 的總 RNA。

本表格針對各種樣品列出了參考用量，詳細用量請參見說明書

• 細胞樣品

• 組織樣品

• 液體樣品

1. 添加等體積的 100% 無水乙醇到 TRIZOL 的裂解物中混合；

2. 把混合物加到 ZYMO-SPIN IIC 柱上并且套在收集管里，離心，去除濾出液；

3. 可以采用柱上消化的 DNA 的步驟去除 DNA（可選）；

4. 添加 Direct-zol wash buffer 400 μL 到柱子上離心，去除濾出液；

5. 添加 RNA wash buffer 700 μL 到柱子上離心，去除濾出液；

6. 直接添加 50 μL of DNase/RNase-Free Water 到柱基質(zhì)上，下面套上一個干凈的 1.5 mL EP 管離心收集 RNA。