Real Time PCR技術最早報告在1991年，是由日本人Hihuchi提出的。當時他的想法就是想實時觀察PCR反應的全過程，最終達到檢測樣品中的DNA量的目的。他使用了EB(溴乙錠)作為熒光標記染料，利用了PCR反應中的數(shù)學函數(shù)關系，再結(jié)合加入標準品的方法，達到了對檢測樣品進行準確定量的目的。

1995年美國PE公司成功研制了TaqMan技術，1996年又推出了首臺Real Time PCR檢測系統(tǒng)，使Real Time PCR技術真正得以應用和推廣。近年，Real Time PCR技術不斷完善，取得了突飛猛進的發(fā)展，由于其具有操作簡單、快速方便、靈敏度高、重復性好、污染率低等優(yōu)點，被廣泛應用于醫(yī)學檢測、藥物療效考核、基因表達研究、轉(zhuǎn)基因研究、基因檢測、病原體檢測、動植物檢測、食品檢測等各種領域。

市面上常見的幾款熒光PCR機型。

市場主流熒光PCR機型

熒光實時定量PCR定量原理：

PCR每進行1個循環(huán)，DNA呈2倍的指數(shù)關系增長，不久達到平臺期。起始DNA量越多擴增產(chǎn)物量便越早達到檢出值，也就是擴增曲線越早起峰。我們將已知濃度的標準品梯度稀釋進行Real Time PCR，就會按照起始DNA量由多到少得順序等間隔得到一系列擴增曲線。再由Ct值與起始模板的對數(shù)值之間存在的線性關系，就可以制作成下圖標示的標準曲線。未知濃度的樣品與標準品相同，檢測未知樣品CT值，并將其代人標準曲線，就可以求出未知濃度樣品的起始模板量，這就是Real Time PCR的定量原理。

在實時熒光定量 PCR 反應中，引入了一種熒光化學物質(zhì)，隨著 PCR 反應的進行， PCR 反應產(chǎn)物不斷累計，熒光信號強度也等比例增加。每經(jīng)過一個循環(huán)，收集一個熒光強度信號，這樣我們就可以通過熒光強度變化監(jiān)測產(chǎn)物量的變化，從而得到一條熒光擴增曲線。

實時熒光擴增曲線圖

PCR的擴增曲線實際上并不是一條標準的指數(shù)曲線，而是S形曲線。這是因為隨著PCR循環(huán)數(shù)的增加，DNA聚合酶的失活，dNTP和引物的枯竭，反應副產(chǎn)物焦磷酸對合成反應的阻害等原因，致使PCR并非一直呈指數(shù)擴增，而最終將進入平臺期。

熒光擴增曲線可以分成三個階段：熒光背景信號階段 , 熒光信號指數(shù)擴增階段和平臺期。在熒光背景信號階段，擴增的熒光信號被熒光背景信號所掩蓋，無法判斷產(chǎn)物量的變化。而在平臺期，擴增產(chǎn)物已不再呈指數(shù)級的增加，PCR 的終產(chǎn)物量與起始模板量之間沒有線性關系，所以根據(jù)最終的 PCR 產(chǎn)物量不能計算出起始 DNA 拷貝數(shù)。只有在熒光信號指數(shù)擴增階段， PCR 產(chǎn)物量的對數(shù)值與起始模板量之間存在線性關系，因此應選擇這個階段進行定量分析。

重要概念的定義：

1．  什么是基線？

基線就是擴增曲線中的水平部分。

線性基線期為擴展最初的10~15個循環(huán)，此時，PCR反應處于起始階段，擴增產(chǎn)物很少，所產(chǎn)生的熒光信號很低。

2. 什么是熒光閾值(Threshold)?

PCR反應的前15個循環(huán)的熒光信號作為熒光本底信號，熒光閾值的缺省設置是3-15個循環(huán)的熒光信號的標準差的10倍，即：Threshold = 10 SDcycle 3-15

3. 什么是CT值？

C代表Cycle，t代表threshold

Ct值的含義是：每個反應管內(nèi)的熒光信號到達設定的閾值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。有實驗證明Ct值大小與樣本中的原始拷貝數(shù)成反比關系。Ct值是實時熒光PCR的主要定量參數(shù)

4. Ct值與起始模板的關系？

每個模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關系，起始拷貝數(shù)越多，Ct值越小。利用已知起始拷貝數(shù)的標準品可作出標準曲線，其中縱坐標代表起始拷貝數(shù)的對數(shù)，橫坐標代表Ct值。因此，只要獲得未知樣品的Ct值，即可從標準曲線上計算出該樣品的起始拷貝數(shù)。

熒光定量PCR標記檢測類型:

1.       內(nèi)摻式染: SYBR Green I

熒光嵌合法通常使用SYBR Green I。SYBR Green I是一種能夠結(jié)合于所有dsDNA雙螺旋小溝區(qū)域的具有綠色激發(fā)波長的染料。它與PCR合成的雙鏈DNA結(jié)合，在激發(fā)光照射下產(chǎn)生熒光，熒光染料結(jié)合到雙鏈DNA后熒光信號增加1000倍，通過熒光強度的檢測，可以實時監(jiān)測PCR擴增的產(chǎn)物量。

溶解曲線：

采用SYBR Green I熒光嵌合法檢測時，可以通過融解曲線分析，確認PCR反應的特異性。溶解曲線分析是在PCR反應結(jié)束后，將PCR反應液的溫度漸漸升高，實時監(jiān)測SYBR Green I的熒光信號強度變化進行的。起初由于PCR擴增產(chǎn)物呈雙鏈，具有較高的熒光信號強度，隨著溫度的漸漸升高，DNA雙鏈漸漸打開，嵌入DNA中的SYBR Green I數(shù)量減少，熒光信號強度就漸漸降低，當雙鏈DNA解鏈一半時，熒光信號強度急劇下降，此時的溫度即融解溫度（Tm值），Tm值與PCR擴增產(chǎn)物的序列有關，對于某一PCR擴增產(chǎn)物，其值是固定的。

 如果出現(xiàn)兩個或以上的峰型，說明有引物二聚體等非特異性擴增產(chǎn)生，需要對反應  條件進行優(yōu)化或重新設計引物。

優(yōu)點：成本較低，無須對引物或探針進行特殊的熒光標記，操作亦比較簡單 ，適合于篩檢。

缺點：特異性不夠，染料分子會結(jié)合到非特異性擴增產(chǎn)生的雙鏈分子和引物二聚體中，使反應體系中的熒光本底較高

2.       序列特異性探針:

熒光共振能量轉(zhuǎn)移（FRET）：當一個熒光基團與一個熒光淬滅基團（可以淬滅前者的發(fā)射光譜）的距離鄰近至一定范圍時，就會發(fā)生熒光能量轉(zhuǎn)移，淬滅基因會吸收熒光基團在激發(fā)光作用下的激發(fā)熒光，從而使其發(fā)不出熒光。但如果熒光基團一旦與淬滅基團分開，淬滅作用即會消失。所以，利用核酸雜交和核酸水解所致熒光基團和淬滅基團結(jié)合或分開的原理，建立各種實時熒光PCR。

a.       Taqman探針：

TaqMan Probe法是使用5’端帶有熒光物質(zhì)（如：FAM等），3’端帶有淬滅物質(zhì)（如：TAMRA等）的TaqMan探針進行熒光檢測的方法。當探針完整時，5’端的熒光物質(zhì)受到3’端的淬滅物質(zhì)的制約，不能檢出熒光。而當TaqMan探針被分解后，5’端的熒光物質(zhì)便會游離出來，發(fā)出熒光。

當PCR反應液中加入熒光探針后，在PCR反應的退火過程中，熒光探針便會和模板雜交，進一步在PCR反應的延伸過程中，DNA聚合酶的5’→3’核酸外切酶活性可以分解與模板雜交的熒光探針，游離熒光物質(zhì)發(fā)出熒光，通過檢測反應體系中的熒光強度，可以達到檢測PCR產(chǎn)物擴增量的目的，具體原理如下圖：

b.       TaqMan MGB 探針:

能分辨一個堿基的差別。