RT-PCR（reverse transcription-polymerase chain reaction, RT-PCR），由一條RNA單鏈轉錄為互補DNA（cDNA）稱作“逆轉錄”，由依賴RNA的DNA聚合酶（逆轉錄酶）來完成。隨后，DNA的另一條鏈通過脫氧核苷酸引物和依賴DNA的DNA聚合酶完成，隨每個循環(huán)倍增，即通常的PCR。原先的RNA模板被RNA酶H降解，留下互補DNA。

RT-PCR的指數(shù)擴增是一種很靈敏的技術，可以檢測很低拷貝數(shù)的RNA。RT-PCR廣泛應用于遺傳病的診斷，并且可以用于定量監(jiān)測某種RNA的含量。

RT-PCR的關鍵步驟是在RNA的反轉錄，要求RNA模版為完整的且不含DNA、蛋白質(zhì)等雜質(zhì)。常用的反轉錄酶有兩種，即鳥類成髓細胞性白細胞病毒（avian myeloblastosis virus，AMV）反轉錄酶和莫羅尼鼠類白血病病毒（moloney murine leukemia virus，MMLV）反轉錄酶。

Real-time-PCR和 qPCR（Quantitative Real-time-PCR）是一碼事，都是實時定量PCR，指的是PCR過程中每個循環(huán)都有數(shù)據(jù)的實時記錄，因此可以對起始模板數(shù)量進行精確的分析。

RT-qPCR（Real-time Quantitative PCR），實時熒光定量PCR 就是在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR擴增反應中每個循環(huán)擴增產(chǎn)物量的變化，最后通過Ct值和標準曲線的分析對起始模版進行定量分析的方法。

一般分為兩類，一類為染料類，包括如SYBR Green I、Eva Green等，通過熒光染料來指示產(chǎn)物的增加；一類為探針類，包括TaqMan探針和分子信標探針等，利用與靶序列特異雜交的探針來指示擴增產(chǎn)物的增加。

SYBR Green I是一種結合于雙鏈DNA小溝中的染料。與雙鏈DNA結合后，其熒光大大增強，這一性質(zhì)使其用于擴增產(chǎn)物的檢測非常理想。SYBRGreen I的最大吸收波長約為497nm ，最大發(fā)射波長約為520nm。在PCR反應體系中，體系中的SYBR Green熒光染料摻入DNA雙鏈后發(fā)射出熒光，并且熒光的強度與體系中雙鏈的濃度成正比，從而保證了熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步，熒光的強度就代表了體系中雙鏈產(chǎn)物的濃度。

優(yōu)點：成本低，不需要探針；準備時間和實驗時間短，操作簡單；可以制作熔解曲線來確定PCR產(chǎn)物是否特異、有無引物二聚體。

缺點：無法多重檢測，只能檢測一個目標基因；無模板特異性，只能給出總信號，對引物的特異性要求較高；靈敏度低，目的片段需在5000拷貝以上。

應用：一般應用于相對定量分析。最適合初步篩查，即先用SYBR Green方法篩查，得到初步結果后再用TaqMan精確定量

原理為PCR擴增時加入一對引物的同時加入一個特異性的熒光探針，該探針為一寡核苷酸：5’端標記一個報告熒光基團，3’端標記一個淬滅熒光基團。探針完整時，報告基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收，不會檢測到熒光；PCR擴增時，Taq酶的5'－3'外切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監(jiān)測系統(tǒng)可接收到熒光信號。每擴增一條DNA鏈，就有一個熒光分子形成，也同樣實現(xiàn)了熒光信號的累積與PCR產(chǎn)物形成完全同步。

優(yōu)點：特異性高，探針提供了額外的特異性；準確性高，可給出特異模板的熒光信號；可應用于多重定量。

缺點：成本較高，合成探針費用較貴，等待時間長。

應用：一般應用于絕對定量分析，MGB探針等可應用于SNP的檢測。

基本原理：被檢測的染色體或DNA纖維切片上的靶DNA與所用的核酸探針是同源互補的，二者經(jīng)變性-退火-復性，即可形成靶DNA與核酸探針的雜交體。將核酸探針的某一種核苷酸標記上報告分子如生物素、地高辛，可利用該報告分子與熒光素標記的特異親和素之間的免疫化學反應，經(jīng)熒光檢測體系在鏡下對待測DNA進行定性、定量或相對定位分析。

優(yōu)勢：①安全、快速、靈敏度高；②探針能較長時間保存；③多色標記，簡單直觀；④可用于中期染色體及間期細胞的分析；⑤可應用于新鮮、冷凍或石蠟包埋標本以及穿刺物和脫落細胞等多種物質(zhì)的檢測。

應用：① 已知基因或序列的染色體定位；② 未克隆基因或遺傳標記及染色體畸變的研究。

 cDNA 末端快速擴增 (rapid amplification of cDNA ends,RACE)【參考文獻：Rapid Amplification of cDNA Ends (RACE).pdf】

RACE技術是一種基于mRNA反轉錄和 PCR技術建立起來的、以部分的已知區(qū)域序列為起點,擴增基因轉錄本的未知區(qū)域,從而獲得mRNA(cDNA)完整序列的方法。簡單的說就是一種從低豐度轉錄本中快速增長cDNA5’和cDNA3’末端，進而獲得獲得全長cDNA簡單而有效的方法，該方法具有快捷、方便、高效等優(yōu)點,可同時獲得多個轉錄本。因此近年來RACE技術已逐漸取代了經(jīng)典的cDNA文庫篩選技術,成為克隆全長cDNA序列的常用手段。

RACE 是采用PCR 技術由已知的部分cDNA 順序來擴增出完整cDNA5’和3’末端,是一種簡便而有效的方法, 又被稱為錨定 PCR (anchoredPCR)和單邊PCR(one2side PCR)。

利用mRNA的3'末端的poly（A）尾巴作為一個引物結合位點，以連有SMART寡核營酸序列通用接頭引物的Oligo（dT）30MN作為鎖定引物反轉錄合成標準第一鏈cDNA.然后用一個基因特異引物GSP1（gene specific primer，GSP）作為上游引物，用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM（universal primer，UPM）作為下游引物，以cDNA第一鏈為模板，進行PCR循環(huán)，把目的基因3' 末端的DNA片段擴增出來。

先利用mRNA的3'末端的poly（A）尾巴作為一個引物結合位點，以Oligo（dT）30MN作為鎖定引物在反轉錄酶MMLV作用下，反轉錄合成標準第一鏈cDNA.利用該反轉錄酶具有的末端轉移酶活性，在反轉錄達到第一鏈的5'末端時自動加上3-5個（dC）殘基，退火后（dC）殘基與含有SMART寡核苷酸序列Oliogo（dG）通用接頭引物配對后，轉換為以SMART序列為模板繼續(xù)延伸而連上通用接頭（見Figure 2 ）。然后用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM（universal primer，UPM）作為上游引物，用一個基因特異引物2（GSP 2 genespecific primer，GSP）作為下游引物，以SMART第一鏈cDNA為模板，進行PCR循環(huán)，把目的基因5'末端的cDNA片段擴增出來。最終，從2個有相互重疊序列的3'/ 5'-RACE產(chǎn)物中獲得全長cDNA，或者通過分析RACE產(chǎn)物的3'和5'端序列，合成相應引物擴增出全長cDNA。

RNA pull down（鑒定與目的lncRNA結合的蛋白配體） 技術是檢測 RNA 結合蛋白與其靶 RNA 之間相互作用的重要實驗手段。利用體外轉錄法標記生物素 RNA 探針，然后與胞漿蛋白提取液孵育，形成 RNA-蛋白質(zhì)復合物。該復合物可與鏈霉親和素標記的磁珠結合，從而與孵育液中的其他成分分離。復合物洗脫后，通過 Western Blot 實驗檢測特定的 RNA 結合蛋白是否與 RNA 相互作用。

賽默飛世爾推出的Pierce Magnetic RNA-Protein Pull-Down Kit試劑盒原理圖

試劑盒利用T4 RNA連接酶將單個脫硫生物素化的胞苷二磷酸連接到單鏈RNA的3’端。3’端的末端標記不干擾RNA結構，因此，比標記核苷酸的隨機摻入更加理想。每個標記反應適合50 pmol RNA；不過，如有必要的話，標記反應也可擴展（從1 pmol到1 nmol）。標記反應需要20倍過量的脫硫生物素化核苷酸。對于不太復雜的RNA，孵育時間可為37°C 30分鐘，若是更長或更復雜的RNA，時間也延長到4-16°C過夜。通過改變RNA與核苷酸的比例，延長孵育時間，或在標記反應中添加DMSO，可優(yōu)化復雜RNA的標記效率。

RBP的富集過程經(jīng)過優(yōu)化，相當簡單。首先將RNA與鏈霉親和素磁珠結合。之后在蛋白質(zhì)-RNA結合緩沖液中平衡RNA結合的磁珠，再加入蛋白裂解液。隨后添加適當?shù)木彌_液、渦旋振蕩，并在磁力架上分離，洗滌磁珠。最后樣品可通過非變性的生物素洗脫緩沖液或SDS-PAGE上樣緩沖液洗脫，用于下游分析（如Western blotting和質(zhì)譜（MS））。

CHIRP-Seq 是一種檢測與 RNA 綁定的 DNA 和蛋白的高通量測序方法。采用生物素和鏈霉親和素探針把目標 RNA 拉下來后，則與其共同作用的 DNA 染色體片段就會附在磁珠上，最后把染色體片段做高通量測序，就會得到該RNA能夠結合在基因組的哪些區(qū)域；如果結合物是蛋白質(zhì)，可以將蛋白質(zhì)打斷成肽段進行質(zhì)譜鑒定。

ChIRP( Chromatin Isolation by RNA Purification )，針對每個特定的lncRNA分子序列，按照100nt的步長設計長度為20個堿基長度的特異性反義核酸序列，并對所有序列進行編號，以奇數(shù)為一組，偶數(shù)為一組，合成末端修飾Biotin-TEG基團的lncRNA ChIRP probe。lncRNA ChIRP probe與交聯(lián)的lncRNA分子復合物進行特異性雜交結合，通過末端修飾Biotin-TEG化學基團，利用鏈霉親和素偶聯(lián)的磁珠進行結合，純化出目標lncRNA所結合的染色質(zhì)復合體，最后從復合體中純化出RNA、DNA和蛋白質(zhì)用于后續(xù)的分析，以發(fā)現(xiàn)目標lncRNA的分子作用機制?！緟⒖嘉墨I：chirp.pdf】

（1）通過 QD-FISH 原位雜交技術定位；或者通過細胞核質(zhì)分離試劑盒得到 RNA，qRT-PCR 檢測其分布；

（2）全長序列試驗方法：通過 5′RACE 獲取 lncRNA5′ 全長， 3′RACE 獲取 lncRNA3′ 全長，最終得到 lncRNA 完整的全長序列。

lncRNA 較長，承載的信息量多，更容易形成高級結構，其功能具有多樣化和特異性強的特點。類似于 miRNA，探討 lncRNA 功能可用 gain/loss of function 策略，過表達或沉默 lncRNA 后觀察表型。即研究 lncRNA 功能獲得后或者功能缺失后對細胞增殖、凋亡、侵襲、轉移與克隆形成，以及病毒的轉錄復制等的影響。

（1）功能獲得性研究

構建 lncRNA 過表達質(zhì)?；蛘呗《尽⑾俨《景b載體。原則上是將全長 lncRNA 定向克隆到表達載體上實現(xiàn) lncRNA 的過表達。然而有些 lncRNA 很大或全長尚未分離，這時將視 lncRNA 在基因組上的定位采取不同的研究策略。在構建 lncRNA 表達質(zhì)粒時，需關注 lncRNA 是否在蛋白編碼基因的啟動子區(qū)域或 3′-UTR 區(qū)域，勿遺漏重要區(qū)段。

（2）功能缺失性研究

可用 siRNA、shRNA、反義核酸、CRISPR/Cas9 等方法沉默 lncRNA，經(jīng) qRT-PCR 或 FISH 等驗證后觀察其對疾病相關基因表達和對細胞表型等的影響。

lncRNA 可與蛋白質(zhì)、DNA 和 RNA 相互作用，但是目前最常用的還是利用體外轉錄、RNA pull down、RNA-RIP（RNA Binding Protein Immunoprecipitation）、CHIRP-seq（Chromatin isolation by RNA Purification）、MS 等技術手段。

將 lncRNA 表達與其他領域相結合，解釋其調(diào)控機理。（1）DNA 甲基化和乙酰化：可通過檢測相應基因甲基化、乙?；町惻c lncRNA 結合分析。（2）轉錄因子：研究 lncRNA 與轉錄因子的調(diào)控機制。

有條件的實驗室，可以繼續(xù)在體內(nèi)或者臨床樣本水平進行驗證。

lncRNA的作用機制不清楚，lncRNA 的功能非常難研究。當前很多通過研究 miRNA 與 lncRNA 的調(diào)控關系來揭示非編碼 RNA 的功能，最熱門的要數(shù) ceRNA 調(diào)控網(wǎng)絡。相關的可利用資源包括：

（1）starBase 平臺構建了最全面的 CLIP-Seq 實驗支持的 miRNA 和 lncRNA 的調(diào)控關系網(wǎng)絡，包括構建了 ceRNA 調(diào)控網(wǎng)絡 。

（2）DIANA-LncBase 數(shù)據(jù)庫 只是構建了基于單個 CLIP-Seq 數(shù)據(jù)的 miRNA 和 lncRNA 調(diào)控關系。