日韩黑丝制服一区视频播放|日韩欧美人妻丝袜视频在线观看|九九影院一级蜜桃|亚洲中文在线导航|青草草视频在线观看|婷婷五月色伊人网站|日本一区二区在线|国产AV一二三四区毛片|正在播放久草视频|亚洲色图精品一区

分享

疫苗用mRNA遞送系統(tǒng)性能的決定因素

 宋社吾 2021-10-29

mRNA遞送系統(tǒng)性能的決定因素是多因素且相互作用的,包括:(1)它們遞送到適當(dāng)細(xì)胞并有效釋放mRNA到細(xì)胞質(zhì)翻譯機(jī)制的效力或能力;(2)它們的佐劑性,可增強(qiáng)免疫應(yīng)答;和(3)將注射部位過度炎癥或全身分布和脫靶表達(dá)可能引起的不良事件或毒性的任何作用降至最低。

1、劑量

目前SARS-CoV-2臨床試驗正在追求的大范圍劑量(1-100μg)最容易理解mRNA遞送系統(tǒng)的效力(表1)。人體試驗中的劑量明確分為核苷修飾RNA(Moderna,BioNTech)較高的30-100μg劑量、未修飾RNA(CureVac,Translate Bio)較低的7.5-20μg劑量,甚至自我擴(kuò)增RNA(Arcturus,倫敦帝國理工學(xué)院)較低的1-10μg劑量。在確定這些劑量時,考慮兩個因素:中和抗體滴度水平和與恢復(fù)期血漿相比達(dá)到的T細(xì)胞應(yīng)答,以及每個劑量下發(fā)生的不良事件的頻率和嚴(yán)重程度。似乎存在一個相當(dāng)窄的接受窗口,其中達(dá)到保護(hù)作用所需的劑量也接近于產(chǎn)生不可接受的頻率和嚴(yán)重程度的不良事件的劑量,即所有i期臨床試驗中試驗停藥的最高劑量。與恢復(fù)期血漿相比,在BioNTech 1期試驗中檢測的兩種改良核苷構(gòu)建體具有較高的中和滴度,其中編碼膜結(jié)合全長刺突蛋白的較大構(gòu)建體具有較低的不良事件頻率和嚴(yán)重程度,因此選擇其用于3期研究。值得注意的是,劑量以質(zhì)量表示,而摩爾劑量取決于結(jié)構(gòu)的長度,此外,實際翻譯的mRNA量是其中的一小部分,取決于遞送系統(tǒng)的效率和靶向特性。

在感染性疾病的預(yù)防性mRNA疫苗的動物研究中,當(dāng)使用魚精蛋白、樹狀大分子和早期陽離子脂質(zhì)系統(tǒng)時,在小鼠體內(nèi)的10-80μg范圍內(nèi)初始劑量能夠產(chǎn)生相當(dāng)高的中和抗體或免受病毒攻擊的保護(hù)能力(表3)。當(dāng)使用最近的LNPs時,當(dāng)給予兩次時,小鼠中和所需的劑量顯著降低到接近1μg水平,而對于未修飾的mRNA,劑量似乎較低,接近0.25μg。自我擴(kuò)增mRNA的劑量可以更低,如0.1μg給藥兩次或2μg給藥一次。在較大的動物模型(倉鼠、雪貂和非人靈長類動物)中,有限的研究表明其劑量范圍較寬,為5μg至200μg,無明顯模式。有趣的是,當(dāng)使用體表面積將人用劑量轉(zhuǎn)換為動物劑量時,60 kg人的100μg劑量相當(dāng)于3 kg恒河猴的15μg劑量和20 g小鼠的0.4μg劑量[139],大概范圍列于表1和表3中。遞送系統(tǒng)顯然在確定有效劑量中起重要作用。人們強(qiáng)烈希望提高給藥效率,以降低劑量并維持效價,因為這有可能通過減少mRNA和給藥溶劑的局部反應(yīng)和脫靶效應(yīng)來降低不良事件頻率和嚴(yán)重程度。減少劑量還將降低所需原料的量和與每個個體接種相關(guān)的成本。特別是,目前的COVID-19大流行使人們關(guān)注mRNA LNP疫苗的一些重大供應(yīng)鏈和生產(chǎn)能力限制,可以用更高效的遞送系統(tǒng)來改善。

表3體內(nèi)預(yù)防性接種中的mRNA劑量。顯示了不同mRNA遞送系統(tǒng)和不同種屬誘導(dǎo)中和抗體滴度所需的mRNA劑量,或提供病毒攻毒保護(hù)的劑量。與早期遞送系統(tǒng)相比,用于mRNA遞送的脂質(zhì)納米顆粒(LNPs)的出現(xiàn)將所需劑量降低了約10倍。

輸送系統(tǒng)

mRNA類型

種屬

劑量

讀出作用

參考文獻(xiàn)

裸mRNA

未修飾

小鼠

80 μg 兩次

保護(hù)

[140]

裸mRNA

自放大

小鼠

1.25 μg兩次

保護(hù)

[140]

魚精蛋白

未修飾

小鼠

10 μg 兩次

中和滴度

[66]

魚精蛋白

未修飾

小鼠

80 μg兩次

保護(hù)

[66]

改良Dendrimer

未修飾

小鼠

40 μg 一次 或4 μg兩次

中和滴度

[126]

DOTAP/DOPE/PEG

核苷修飾

小鼠

12 μg兩次鼻內(nèi)

中和滴度和保護(hù)作用

[130]

陽離子納米乳

自放大

小鼠

15 μg 兩次

中和滴度

[70]

納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體

自放大

小鼠

0.1 μg 一次

中和滴度

[71]

LNP   (Acuitas)

未修飾

小鼠

0.5 μg 兩次

中和滴度

[69]

LNP (MC3)

核苷修飾

小鼠

10 μg 一次 or 2 μg 兩次

保護(hù)

[99]

LNP (MC3)

核苷修飾

小鼠

0.4 μg 一次

保護(hù)

[97]

LNP   (Acuitas)

核苷修飾

小鼠

0.5 μg 一次

保護(hù)

[141]

LNP   (Acuitas)

核苷修飾

小鼠

1 μg 兩次

中和滴度

[49]

LNP   (Moderna)

核苷修飾

小鼠

1 μg 兩次

中和滴度和保護(hù)作用

[45]

LNP   (Acuitas)

未修飾

小鼠

0.25 μg 兩次

中和滴度

[53]

LNP (Translate   Bio)

未修飾

小鼠

0.2 μg 兩次

中和滴度

[56]

LNP   (Arcturus)

自放大

小鼠

2 μg 一次

中和滴度和保護(hù)作用

[58]

LNP   (Acuitas)

自放大

小鼠

0.1 μg 兩次

中和滴度

[60]

LNP (Acuitas)

未修飾

敘利亞倉鼠

10 μg 兩次

保護(hù)

[53]

LNP (MC3)

核苷修飾

雪貂

50 μg 一次

中和滴度

[97]

陽離子納米乳

自放大

非人靈長類動物

75 μg兩次

中和滴度

[70]

LNP (MC3)

核苷修飾

非人靈長類動物

200 μg 兩次

中和滴度

[97]

LNP (MC3 or Moderna   Lipid H)

核苷修飾

非人靈長類動物

5 μg 兩次

中和滴度

[42]

LNP   (Acuitas)

核苷修飾

非人靈長類動物

30 μg兩次

中和滴度

[49]

LNP   (Moderna)

核苷修飾

非人靈長類動物

100 μg 兩次

中和滴度

[45]

LNP (Translate   Bio)

未修飾

非人靈長類動物

15 μg兩次

中和滴度

[56]

2、效力和遞送效率

有許多研究試圖確定LNP和其他核酸遞送系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)-功能關(guān)系。LNP最常被引用的決定其效力或遞送效率的特征是其pKa。pKa是LNP中50%可電離脂質(zhì)質(zhì)子化的pH值。迄今為止,LNP pKa僅用稱為TNS的染料結(jié)合測定法測量,TNS帶負(fù)電荷,結(jié)合帶正電荷的LNP后出現(xiàn)熒光增強(qiáng)[88]。在覆蓋廣泛pH值范圍的緩沖液中與TNS孵育的LNPs的熒光測量用于推斷染料與表面電荷的結(jié)合,當(dāng)出現(xiàn)最大熒光的一半時,即得到pKa估計值。眾所周知,基于MC3的Onpattro LNP在IV給藥后沉默肝細(xì)胞的最佳pKa為6.4[92]。對于任何能夠影響肝細(xì)胞沉默的LNP,其TNS pKa在6.2-6.8范圍內(nèi)都有一個非常尖銳的最佳值。解釋這種pKa依賴性的極好模型是基于LNP中的可電離脂質(zhì)在pH 7.4時接近中性,而內(nèi)化進(jìn)入細(xì)胞后,內(nèi)涵體pH明顯下降,隨著內(nèi)涵體途徑吞噬的推進(jìn),從而逐漸質(zhì)子化可電離脂質(zhì),然后,它將與內(nèi)涵體的陰離子內(nèi)源性磷脂結(jié)合,并破壞其雙層結(jié)構(gòu),將mRNA釋放到細(xì)胞質(zhì)中進(jìn)行核糖體裝載[17]。內(nèi)涵體破壞需要可電離脂質(zhì)的額外特征,即脂質(zhì)尾部橫截面大于其頭基的錐形形態(tài)。這使得可電離的脂質(zhì)/內(nèi)涵體磷脂離子對與雙層不相容,更可能形成可破壞內(nèi)體膜的倒六角形相等結(jié)構(gòu)。這被稱為分子形狀假說[91],解釋了為什么在飽和C18烷基鏈中引入一個或兩個雙鍵會產(chǎn)生更多的圓錐形和更少的圓柱形形態(tài),即膜破壞和溶酶體溶解[88]。這兩個C18亞油酸尾,結(jié)合二甲胺頭基的適當(dāng)調(diào)整pKa,是MC3可電離脂質(zhì)的明確特征。替代MC3進(jìn)行mRNA遞送的可電離脂質(zhì)保留了pKa的需求,但通過在烷基尾部引入更多的分支來追求更大的內(nèi)體溶解特性。例如,Moderna的脂質(zhì)H和脂質(zhì)5具有三個烷基尾,Arcturus的脂質(zhì)2,2(8,8)4 C CH3也是如此,而Acuitas ALC-0315具有四個烷基尾,A9具有五個烷基尾(表2)。這種增強(qiáng)的錐形形態(tài)可能是為什么包含這些可電離脂質(zhì)的LNPs是更有效的遞送載體,具有更大的內(nèi)體釋放的原因。

盡管LNP pKa和分子形狀假說被公認(rèn)為有助于LNP遞送效率,但其他因素也很重要,如PEG–脂質(zhì)在LNP表面的穩(wěn)定性,以及乙醇溶液中4種脂質(zhì)的比例,最終決定了LNP超微結(jié)構(gòu)。如上所述,PEG–脂質(zhì)通過提供親水性外殼控制LNP大小,限制組裝過程中的囊泡融合,使較高的PEG–脂質(zhì)濃度產(chǎn)生較小的LNPs。例如,一項研究表明,PEG脂質(zhì)的摩爾分?jǐn)?shù)從0.25%變?yōu)?%可使LNP大小從117 nm減小至25 nm,肝細(xì)胞沉默的最佳大小為78 nm,由2.5%PEG脂質(zhì)生成[142]。由于PEG–脂質(zhì)的烷基尾有14個碳,它沒有穩(wěn)定地錨定在LNP表面,被發(fā)現(xiàn)在循環(huán)中從LNP逐漸脫落,同時可電離脂質(zhì)MC3和DSPC的脫落。這種PEG脫落被認(rèn)為在某個時間點(diǎn)使LNP有轉(zhuǎn)染能力,但是,如果太極端,導(dǎo)致可電離脂質(zhì)和DSPC的快速丟失,這將對內(nèi)體釋放產(chǎn)生負(fù)面影響。例如,通過將烷基尾延伸到18個碳,PEG–脂質(zhì)沒有脫落,但在肝細(xì)胞中也沒有沉默。另一方面,加入較高濃度的PEG使顆粒變小,導(dǎo)致更快的脫落,可電離脂質(zhì)的損失和沉默減少。LNP的不穩(wěn)定和動態(tài)性質(zhì)目前只是部分了解。另一項研究還發(fā)現(xiàn),與100 nm處的較大LNP(0.5%PEG-脂質(zhì))以及48 nm處的較小LNP(3%PEG-脂質(zhì))相比,用1.5%PEG-脂質(zhì)制成的中等大小直徑64 nm的LNP對mRNA遞送更有效,與上述研究相似[89]。然而,通過改變四種脂質(zhì)的摩爾比,在64 nm 1.5%PEG–脂質(zhì)LNP中發(fā)現(xiàn)的最佳值下保留LNP PEG層下DSPC的計算密度,這些研究者能夠制造更大的100 nm LNPs,與64 nm大小的LNPs相比,mRNA表達(dá)增加兩倍。因此,除了LNP pKa、可電離脂質(zhì)分子形狀和PEG–脂質(zhì)的動力學(xué)外,LNP超微結(jié)構(gòu)的更詳細(xì)特征和各組分的狀態(tài)在確定效價方面也很重要。

3、內(nèi)涵體釋放

另詳細(xì)研究了siRNA-LNPs的內(nèi)體釋放細(xì)胞攝取和內(nèi)體運(yùn)輸,并假定與mRNA LNPs的攝取和內(nèi)體運(yùn)輸相似。對于MC3 LNP,在電子顯微鏡下使用膠體金顆粒計數(shù)進(jìn)行的定量研究表明,只有2%的內(nèi)體siRNA實際上從內(nèi)體逃逸到細(xì)胞質(zhì)中,導(dǎo)致每個細(xì)胞有幾千個siRNA分子可用于沉默[106]。然而,這個數(shù)字與在治療相關(guān)濃度下每個細(xì)胞與RISC相互作用的功能活性siRNA的估計水平在相同的范圍內(nèi)。因此,絕大多數(shù)siRNA注定會發(fā)生內(nèi)體降解或通過多泡體(晚期內(nèi)體)再循環(huán),在外泌體中釋放[143,144]。增加LNPs的內(nèi)體溶解行為是提高遞送效率的中心方法,主要是通過pKa調(diào)整LNP和通過增加可電離脂質(zhì)的錐形形態(tài)。對于后者,Lipid H[42]和Lipid 5[101],在MC3中含有三個分支而在MC3中含有兩個分支,但具有相似的pKa,與MC3相比,內(nèi)體釋放增加了4倍。Acuitas ALC-0315的內(nèi)體釋放尚未見報道;但其肝細(xì)胞沉默效率是MC3的10倍[47],提示其更多的錐形四分支結(jié)構(gòu)也具有更高的內(nèi)體釋放。因此,這些新一代的可電離脂質(zhì)似乎實現(xiàn)了內(nèi)體釋放,與MC3 siRNA-LNPs發(fā)現(xiàn)的2-5%相比,接近15%或更高。這方面的挑戰(zhàn)之一是缺乏一種可靠的標(biāo)準(zhǔn)化內(nèi)體釋放方法,可以廣泛實施。已經(jīng)開發(fā)了許多方法,但通常僅針對一個實驗室組[42,101,145,146,147,148,149]。最近還發(fā)現(xiàn)mRNA發(fā)生胞吐作用的量與釋放到細(xì)胞質(zhì)中的量相似[150]。MC3 LNPs在晚期內(nèi)體和MC3的NP 1復(fù)合物中解體,mRNA被重新包裝成從細(xì)胞中輸出的外泌體。這些內(nèi)-外泌體保持了與它們來源的原始MC3 LNPs相似的mRNA遞送能力,但可以運(yùn)輸?shù)讲煌慕M織,似乎免疫激活較少。LNPs遞送的mRNA的這種外泌體再分布的潛在意義仍有待探索。

4、電荷和配體介導(dǎo)的靶向作用

早期的脂質(zhì)納米顆粒使用永久帶電不可電離且很大的陽離子脂質(zhì),由于它們的永久正電荷,被迅速調(diào)理,一般靶向肺。BioNTech的研究小組減少了DOTMA/DOPE mRNA LNPs中陽離子DOTMA的量,直到NP比率小于1時,陰離子mRNA過量導(dǎo)致凈電荷為負(fù)電荷。靜脈注射這些帶負(fù)電荷的300 nm大的mRNA LNPs后,產(chǎn)生脾臟靶向作用,樹突狀細(xì)胞中的mRNA表達(dá),它們能夠介導(dǎo)腫瘤免疫治療的適應(yīng)性以及I型IFN介導(dǎo)的先天性免疫機(jī)制[151]。同樣,使用C12-200原型LNP產(chǎn)生脾臟靶向mRNA LNPs,但用小的樹突可電離脂質(zhì)Cf-Deg-Lin替換C12-200,它具有4個亞油酸烷基鏈和4個氮原子,TNS pKa為5.7。LNP的這種非常低的pKa將確??呻婋x脂質(zhì)在pH低于7時才被質(zhì)子化,這種LNP可以承擔(dān)mRNA的凈負(fù)電荷,可一直維持到細(xì)胞內(nèi)體途徑吞噬,因此類似地運(yùn)輸?shù)狡⑴K[152]。他們發(fā)現(xiàn)脾臟中表達(dá)mRNA的主要細(xì)胞群是B淋巴細(xì)胞,根據(jù)流式細(xì)胞分析,其中7%的B淋巴細(xì)胞表達(dá)mRNA。最近,使用三種不同的堿性LNPs實現(xiàn)了電荷介導(dǎo)的靶向作用,MC3、C12-200或5A2-SC8作為可電離脂質(zhì)混合在永久性陽離子脂質(zhì)(DOTAP)或永久性陰離子脂質(zhì)(18 Pa)的一定摩爾分?jǐn)?shù)中,賦予LNPs凈正性,凈負(fù)電荷或中間近中性凈電荷[153]。與上述發(fā)現(xiàn)一致,高陽性LNPs靶向肺部,高陰性LNPs靶向脾臟,而中間電荷水平主要靶向肝臟。已證明肝臟靶向作用依賴于Apo-E與近中性脂質(zhì)體或LNPs的結(jié)合[154],而帶負(fù)電荷的脂質(zhì)體不會發(fā)生這種情況[155]。

值得注意的是,上述所有電荷介導(dǎo)的靶向研究均使用IV給藥進(jìn)行,尚未檢查通常用于疫苗接種的途徑,如肌內(nèi)或皮內(nèi)途徑。然而,大多數(shù)分析肌內(nèi)注射后表達(dá)的研究確實檢測到mRNA LNPs的全身轉(zhuǎn)運(yùn),其在肝臟中快速和強(qiáng)烈表達(dá),同時在肌肉和引流淋巴結(jié)中表達(dá)[97,156,157]。因此,這些特殊的LNPs似乎進(jìn)入脈管系統(tǒng),隨后由于被動的ApoE介導(dǎo)的靶向作用在肝細(xì)胞中表達(dá),這并不奇怪,因為它們是為肝細(xì)胞靶向作用而設(shè)計的。然而,免疫原的這種全身分布和表達(dá)可能產(chǎn)生全身細(xì)胞因子、補(bǔ)體激活,并導(dǎo)致其他潛在的不良反應(yīng),可能放大不良事件的頻率或嚴(yán)重程度和/或損害免疫應(yīng)答的產(chǎn)生。最后,配體介導(dǎo)的LNPs靶向作用的研究數(shù)量有限。通過將CD31(PECAM)抗體與LNP偶聯(lián)并血管內(nèi)注射實現(xiàn)肺內(nèi)皮細(xì)胞靶向[158]。然后,肝臟中肝細(xì)胞導(dǎo)向的LNP大部分重定向至肺。使用VCAM配體的類似方法成功地將LNPs靶向大腦炎癥區(qū)域,并減輕TNF-α誘導(dǎo)的腦水腫[159]。使用甘露糖基化脂質(zhì)體也可以更有效地轉(zhuǎn)染體外樹突狀細(xì)胞,這可能是一種適用于疫苗接種的策略[160]。還開發(fā)了識別靶向特定細(xì)胞類型配體的高通量篩選方法,可能適用于靶向特定樹突狀細(xì)胞亞群[161,162]。
5、脂質(zhì)納米顆粒的佐劑性

脂質(zhì)納米顆粒具有自身的佐劑活性。一項在小鼠(10μg劑量)和非人靈長類動物(100μg劑量)中進(jìn)行的核苷修飾mRNA LNPs(來自Acuitas)(編碼各種免疫原)研究顯示,與滅活病毒相比,抗原特異性濾泡輔助性T細(xì)胞(Tfh)和生發(fā)中心B細(xì)胞(GC B)的數(shù)量增加[33]。Tfh細(xì)胞驅(qū)動免疫球蛋白類別轉(zhuǎn)換、親和力成熟以及長期B細(xì)胞記憶和漿細(xì)胞。當(dāng)FLuc mRNA LNP與蛋白亞單位HA免疫原共同給藥時,發(fā)現(xiàn)了LNP本身的佐劑特性,生發(fā)中心B細(xì)胞數(shù)量增加了4倍,盡管與單獨(dú)蛋白相比,Tfh細(xì)胞的數(shù)量沒有增加。因此,LNP似乎放大了GC B細(xì)胞的反應(yīng),特別是對核苷修飾的mRNA LNP。另一項研究使用來自默克的不對稱可電離脂質(zhì)研究了LNPs作為乙型肝炎蛋白亞單位疫苗的佐劑[163]。LNPs與蛋白亞單位疫苗共同給藥增強(qiáng)了B細(xì)胞對與已知疫苗佐劑相當(dāng)水平的反應(yīng),包括基于鋁的佐劑、寡核苷酸和TLR4激動劑、3-O-脫酰基單磷酰脂質(zhì)a(MPL)。LNPs引起了強(qiáng)效的抗原特異性CD4 和CD8 T細(xì)胞應(yīng)答,Th1與Th2偏倚可能進(jìn)一步受到LNP中包含額外佐劑的影響。該組使用登革病毒免疫原進(jìn)行的后續(xù)研究發(fā)現(xiàn),LNP中的佐劑活性同樣較強(qiáng),且該活性取決于是否存在可電離脂質(zhì)[164]。脂質(zhì)體中的脂質(zhì)組分之前也被認(rèn)為在粘膜疫苗中具有佐劑活性[165,166]。

6、mRNA LNPs的注射部位反應(yīng)、安全性、耐受性、反應(yīng)原性

在大鼠和非人靈長類動物中,對表達(dá)hEPO的MC3核苷修飾的mRNA LNPs進(jìn)行靜脈注射給藥的一般安全性研究發(fā)現(xiàn),劑量高達(dá)0.3 mg/kg時出現(xiàn)輕度毒理學(xué)事件,該劑量是預(yù)期治療劑量的10倍以上[167]。大鼠中的主要結(jié)果為白細(xì)胞計數(shù)增加、所有劑量下的凝血參數(shù)變化以及肝損傷。非人靈長類動物顯示淋巴細(xì)胞耗竭伴輕度和可逆的補(bǔ)體激活。這些結(jié)果與相同LNPs用于siRNA遞送的早期毒理學(xué)研究一致[168],其中在6 mg/kg時觀察到大鼠死亡,而無可見有害作用水平(NOAEL)確定為1 mg/kg。觀察到血清生化參數(shù)(ALT、AST和TBIL)升高3 mg/kg以上、血尿以及肝臟(空泡形成、炎性細(xì)胞浸潤、纖維化、出血和肝細(xì)胞壞死)、脾臟(淋巴萎縮和壞死)和腎臟(腎小管變性/再生)的鏡檢結(jié)果?;颊咧械陌踩越Y(jié)果包括輸注相關(guān)反應(yīng)(15%的患者,推測為補(bǔ)體介導(dǎo))和促炎性細(xì)胞因子一過性升高。值得注意的是,上述IV給藥劑量(如0.3 mg/kg)比當(dāng)前使用IM給藥的SARS-CoV-2臨床試驗高10倍以上。盡管如此,當(dāng)前人體試驗中的這些較低劑量仍可誘導(dǎo)局部注射部位反應(yīng)和全身不良事件的高頻率和有時中度嚴(yán)重程度。目前,關(guān)于這些動物中人類不良事件的相關(guān)性,發(fā)表的動物研究很少。

使用MC3 LNP進(jìn)行廣泛的恒河猴研究,觀察注射部位和mRNA表達(dá)的轉(zhuǎn)運(yùn),以50μg劑量肌內(nèi)或皮內(nèi)注射核苷修飾的mRNA(編碼流感免疫原H10 mRNA)[98]。他們發(fā)現(xiàn)4-24h內(nèi)注射部位的細(xì)胞快速浸潤,可由LNP單獨(dú)驅(qū)動,主要由中性粒細(xì)胞和單核細(xì)胞組成。表達(dá)mRNA的主要細(xì)胞類型為注射部位和引流淋巴結(jié)中的多個單核細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞亞群。T細(xì)胞應(yīng)答的啟動僅限于引流淋巴結(jié),LNP單獨(dú)不能誘導(dǎo)抗原呈遞細(xì)胞的CD80。疫苗特異性CD4 T細(xì)胞的持續(xù)生成僅發(fā)生在疫苗引流淋巴結(jié)中,其中mRNA編碼抗原的檢測在24h達(dá)到峰值,而抗體應(yīng)答持續(xù)數(shù)周。使用編碼狂犬病病毒糖蛋白G(RABV-G)的非修飾mRNA,以Acuitas LNP遞送小鼠0.5-10μG劑量以及非人靈長類動物10μG和100μG劑量,也報告了與上述一致的結(jié)果[69]。他們還發(fā)現(xiàn),LNP單獨(dú)介導(dǎo)了肌肉注射部位和引流淋巴結(jié)中的細(xì)胞因子生成,但需要認(rèn)識到由于通過血液的運(yùn)輸和在肝臟中的表達(dá), 可以在系統(tǒng)中檢測到IL6。在10μg和100μg劑量下,在非人靈長類動物中均觀察到注射部位紅斑和水腫。

值得注意的是,mRNA遞送系統(tǒng)中使用的LNPs的尺寸范圍為10-100 nm,已知是淋巴管攝取的最佳尺寸,脂質(zhì)聚乙二醇化可改善淋巴管中的滯留[169],并可減少補(bǔ)體激活[109]。自輝瑞/BioNTech疫苗的緊急使用批準(zhǔn)以來,已觀察到數(shù)例急性過敏反應(yīng),相當(dāng)于每100,000次疫苗接種中1例,約為其他疫苗的10倍[170]。這種過敏反應(yīng)的一個可能來源是抗PEG抗體在一般人群中的流行,由于在LNPs中使用PEG–脂質(zhì),這可能在患者亞組中觸發(fā)過敏反應(yīng)。已經(jīng)觀察到PEG介導(dǎo)的過敏反應(yīng),例如,在臨床造影劑[171]和多柔比星脂質(zhì)體制劑[172]中。盡管如此,當(dāng)前SARS-CoV-2疫苗的給藥劑量對應(yīng)于PEG總劑量,比這些產(chǎn)品中發(fā)現(xiàn)的劑量低至少15倍,這似乎減少了這種可能性。另一種可能是反應(yīng)本質(zhì)上是過敏樣反應(yīng),但是對炎癥和其他因素的非特異性反應(yīng)。目前正在進(jìn)行一項臨床研究,以進(jìn)一步闡明該問題[173]。

在過去的二十年里,mRNA療法的進(jìn)展是非凡的,從使用改良核苷和序列工程來確定控制mRNA先天免疫原性的手段,以及mRNA在疫苗和其他治療適應(yīng)癥中的應(yīng)用開始。與以前的系統(tǒng)相比,采用siRNA遞送中使用的脂質(zhì)納米顆粒原型導(dǎo)致遞送效率提高了一個數(shù)量級,并在不斷改進(jìn),主要是由于設(shè)計了新類別的可電離脂質(zhì)。mRNA LNP結(jié)構(gòu)、功能、效力、靶向性和生物學(xué)特征的許多方面如佐劑性等,仍有待探索,以便充分開發(fā)這種強(qiáng)大和變革性治療方式的潛力。

原文來源:Automated Manufacture of Autologous CD19 CAR-T Cells for Treatment of Non-hodgkin Lymphoma.Front.Immunol.11:1941. DOI:10.3389/fimmu.2020.0194

    本站是提供個人知識管理的網(wǎng)絡(luò)存儲空間,所有內(nèi)容均由用戶發(fā)布,不代表本站觀點(diǎn)。請注意甄別內(nèi)容中的聯(lián)系方式、誘導(dǎo)購買等信息,謹(jǐn)防詐騙。如發(fā)現(xiàn)有害或侵權(quán)內(nèi)容,請點(diǎn)擊一鍵舉報。
    轉(zhuǎn)藏 分享 獻(xiàn)花(0

    0條評論

    發(fā)表

    請遵守用戶 評論公約

    類似文章 更多