看過(guò)好多大神的博客,對(duì)自己的學(xué)習(xí)幫助很大,這是額的第一篇博客,其實(shí)是額的生物信息學(xué)作業(yè),感覺(jué)還是有用的,分享給大家。 基因組注釋是在得到全基因組序列后首先要做的。它是利用生物信息學(xué)方法,對(duì)基因組所有基因的生物學(xué)功能進(jìn)行功能注釋?zhuān)ɑ蝾A(yù)測(cè)和基因功能注釋兩個(gè)方面。目前已經(jīng)有許多的基因預(yù)測(cè)工具或者在線注釋網(wǎng)站?;蝾A(yù)測(cè)的方法主要有3 種:(1)分析mRNA和EST數(shù)據(jù)直接得到結(jié)果;(2)通過(guò)相似性比對(duì)從已知基因和蛋白質(zhì)序列得到間接證據(jù);(3)基于各種統(tǒng)計(jì)模型和算法從頭預(yù)測(cè),比如隱馬可夫模型。其中通過(guò)相似性比對(duì)得到預(yù)測(cè)基因的方法最常見(jiàn)。例如,現(xiàn)在流行的做法是先通過(guò)Glimmer、GeneMarks等軟件預(yù)測(cè)出基因組的ORF。然后通過(guò)Blast方法將ORF同其他物種的基因進(jìn)行比對(duì)。有同源基因的ORF被注釋為同樣功能的基因,沒(méi)有同源性的ORF被舍去或注釋為假說(shuō)蛋白(hypothetical protein)。由于注釋需要大量的數(shù)據(jù)庫(kù),為了使注釋變得簡(jiǎn)單,一些研究機(jī)構(gòu)將不同功能的注釋軟件整合在一起,提供在線的注釋服務(wù)。如RAST,Xbase等,NCBI的PGAAP能提供人工的注釋服務(wù)。這些網(wǎng)站只需要用戶將序列和序列的所屬物種分類(lèi)信息提交即可。注釋好的結(jié)果為gbk 格式文件(包含序列和注釋信息) GeneMarks軟件的原理都是使用統(tǒng)計(jì)學(xué)模型的從頭預(yù)測(cè)(ab initio)方法,不依賴任何先驗(yàn)知識(shí)和經(jīng)驗(yàn)參數(shù),通過(guò)描述DNA序列中核苷酸的離散模型,利用編碼區(qū)和非編碼區(qū)的核苷酸分布概率不同來(lái)進(jìn)行基因預(yù)測(cè)。GeneMarks是不需要人為干預(yù)和相關(guān)DNA或rRNA基因的資料即可對(duì)新的細(xì)菌基因組進(jìn)行預(yù)測(cè),測(cè)試表明GeneMarks對(duì)GeneBank數(shù)據(jù)庫(kù)中已注釋的枯草芽孢桿菌的預(yù)測(cè)準(zhǔn)確度達(dá)到82.9%,而對(duì)已通過(guò)實(shí)驗(yàn)方法證實(shí)注釋功能的大腸桿菌的預(yù)測(cè)高達(dá)93.8%,其對(duì)新測(cè)序基因組的預(yù)測(cè)與Glimmer存在同樣問(wèn)題,即相當(dāng)一部分基因在數(shù)據(jù)庫(kù)并不能發(fā)現(xiàn)同源,只能作為假蛋白基因存在。 如何在沒(méi)有明確實(shí)驗(yàn)證據(jù)的前提下鑒定此類(lèi)基因預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,切實(shí)可行的方法就是綜合利用多個(gè)預(yù)測(cè)軟件對(duì)預(yù)測(cè)結(jié)果進(jìn)行比較,分析其中的異同點(diǎn)。 本研究主要以A.baumanniiACICU染色體序列為例對(duì)基因預(yù)測(cè)與注釋的方法進(jìn)行分析,以找到合適的基因預(yù)測(cè)與注釋的方法。 2. 材料與方法(Methods and Materials) 下面利用從NCBI上下載的A.baumanniiACICU全基因組染色體序列(不包含質(zhì)粒序列)(.fasta格式)為例,分別使用GeneMarks(http://topaz./GeneMark/genemarks.cgi)進(jìn)行ORF(開(kāi)放閱讀框)基因預(yù)測(cè),RAST(http://rast./)進(jìn)行功能基因(CDS)注釋?zhuān)瑢?duì)比原結(jié)果進(jìn)行分析。 2.1.使用GeneMarks進(jìn)行ORF預(yù)測(cè) (1)第一步是上傳A.baumaniiACICU染色體序列,并設(shè)置合適的參數(shù),填加自己的郵箱。全部設(shè)置好之后,點(diǎn)擊[StartGeneMarks]開(kāi)始注釋。如下圖所示: (2)第一步上傳結(jié)束序列之后,會(huì)出現(xiàn)如下界面,提示序列已成功提交,注釋好的文件會(huì)發(fā)到所填郵箱。 2.2.使用RAST進(jìn)行功能基因注釋 (1)上傳A.baumaniiACICU(.fasta格式)序列,上傳結(jié)束后點(diǎn)擊[Usethis data and go to step 2]進(jìn)行下一步。如下圖所示: (2)第二步填加必須的的參數(shù),Domain選擇[Bacteria],GeneticCode選擇[11],然后點(diǎn)擊[Usethis data and go to step 3]進(jìn)行下一步操作。如下圖所示: (3)如下圖所示,選擇好合適的參數(shù)后點(diǎn)擊[Finishthe upload],即可等待結(jié)果,注釋結(jié)束后,其會(huì)發(fā)郵件告知 3. 結(jié)果與討論(Results and Discussion) 3.1. 使用GeneMarks預(yù)測(cè)ORF的結(jié)果以及分析 使用GeneMarks進(jìn)行預(yù)測(cè)后,生成了gms.out gms.out.faa gms.out.fnn gms.out.ps四個(gè)文件: 其中g(shù)ms.out文件如下顯示(其中一部分,使用linux系統(tǒng)cat或者h(yuǎn)ead命令查看): Gene Strand LeftEnd RightEnd Gene Class # Length 1 - 76 468 393 1 2 - 506 2974 2469 1 3 - 3027 4109 1083 1 4 - 4124 5272 1149 1 5 - 5370 6767 1398 1 6 + 7438 7572 135 1 7 + 7602 7994 393 1 8 + 8005 8325 321 1 9 + 8331 10091 1761 1 10 + 10182 11537 1356 1 ………… 3711 + 3894879 3896006 1128 1 3712 + 3896134 3896979 846 1 3713 - 3897035 3897370 336 1 3714 - 3897495 3898499 1005 1 3715 - 3898842 3899849 1008 1 3716 - 3900105 3901109 1005 1 3717 + 3901366 3903297 1932 1 3718 + 3903549 3904106 558 1 其中g(shù)ms.out.faa氨基酸序列文件顯示如下(其中之一): >gene_3718|GeneMark.hmm|185_aa|+|3903549|3904106 >gi|184156320|ref|NC_010611.1|Acinetobacter baumannii ACICU, complete genome MNFIDFITNFEQFLPILIQEYGAWVYAILFLIIFSETAFVFMFFLPGDSLLLTVGALCSV VELMHLGYMITLLTVAATLGYIVNYSIGRHFGNRIFEAKSRFIKKEYLNKTNRYFLQHGG KTILLARFIPFARSFAPLAAGSSNMSYGKFLIYNVAGAILWICILLTAGYLFGHALIQVT DFVEN 其中g(shù)ms.out.fnn核苷酸序列如下所示,起始密碼子為ATG,終止密碼子為T(mén)AATGA和TAG(其中之一): >gene_3718|GeneMark.hmm|558_nt|+|3903549|3904106 >gi|184156320|ref|NC_010611.1|Acinetobacter baumannii ACICU, complete genome ATGAATTTTATTGATTTTATTACTAATTTTGAACAATTTTTACCTATTTTGATTCAGGAG TATGGTGCATGGGTTTATGCCATACTCTTTTTGATTATTTTTTCTGAAACTGCTTTTGTG TTTATGTTCTTTTTACCTGGAGATAGCTTACTTTTAACTGTAGGTGCACTGTGCTCGGTG GTTGAACTGATGCATCTTGGTTATATGATTACTCTGCTCACCGTTGCAGCAACATTAGGC TATATCGTCAATTATTCTATTGGCCGCCATTTTGGAAACCGTATTTTTGAAGCAAAATCA CGTTTTATTAAAAAAGAATATTTGAATAAAACGAACCGCTATTTCTTGCAACATGGCGGTAAAACTATTCTTTTAGCACGTTTTATTCCTTTCGCACGTTCTTTTGCACCCCTCGCTGCCGGCTCAAGCAATATGAGCTATGGAAAATTTTTGATTTACAATGTGGCAGGAGCTATTTTGTGGATCTGCATCCTTTTAACGGCTGGCTACCTATTTGGCCATGCACTCATTCAAGTTACAGATTTTGTTGAAAATTAA 由此可知A.baumanniiACICU全基因組經(jīng)GeneMarks預(yù)測(cè)到了3718個(gè)基因。 3.2.使用RAST進(jìn)行功能基因注釋結(jié)果以及分析 以上兩圖是使用RAST對(duì)A.baumannii ACICU染色體序列進(jìn)行注釋的結(jié)果菌株A.baumanniiACICU染色體基因組經(jīng)RAST功能基因注釋?zhuān)沧⑨尩?683個(gè)功能基因。其中分布于不同功能子系統(tǒng)(457)的有1831個(gè),確定的基因(non-hypothetical)有1736個(gè),不確定(hypothrtical)的有95個(gè);其余的編碼基因不分布于這些不同功能的子系統(tǒng)中,共有1852個(gè),其中確定的有908個(gè),不確定的有944個(gè)。 3.3. 綜合分析 對(duì)于A.baumaniiACICU染色體序列,由GeneMarks預(yù)測(cè)到3718個(gè)基因,由RAST注釋到3683個(gè)編碼蛋白基因,與原文獻(xiàn)結(jié)果含有預(yù)測(cè)基因數(shù)(ORF)為3758個(gè),其中編碼蛋白質(zhì)的基因數(shù)為3670個(gè)相比有所不同。其中預(yù)測(cè)基因數(shù)比原文獻(xiàn)少了有40個(gè),差別較大,原文獻(xiàn)聯(lián)合使用GeneMarks與Glimmer對(duì)比預(yù)測(cè),效果較好;注釋基因數(shù)相差比原文獻(xiàn)多13個(gè),差別不大,原文獻(xiàn)中綜合使用COG與KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)預(yù)測(cè)到的蛋白序列進(jìn)行注釋?zhuān)f(shuō)明RAST注釋結(jié)果還是比較可靠的。整個(gè)過(guò)程只是基因注釋的初始工作,要想得到完整準(zhǔn)確的基因注釋結(jié)果,需要使用多個(gè)軟件進(jìn)行注釋?zhuān)瑢?duì)于不能準(zhǔn)確注釋的基因還需要單獨(dú)進(jìn)行注釋?zhuān)詈缶C合分析得到結(jié)果。 參考文獻(xiàn):1. 黃勇: 基于高通量測(cè)序的微生物基因組學(xué)研究. 中國(guó)人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院, 2013. 2. AzizRK, Bartels D, Best AA, Dejongh M, Disz T, Edwards RA, Formsma K, Gerdes S,Glass EM, Kubal M: The RAST Server:Rapid Annotations using Subsystems Technology. Bmc Genomics 2008,9::75. 3. 夏偉: Gluconobacter oxydans 621H全基因組自動(dòng)注釋結(jié)果的分析評(píng)估. 江南大學(xué), 2013. 4. BesemerJ, Lomsadze A, Borodovsky M: GeneMarkS:a self-training method for prediction of gene starts in microbial genomes.Implications for finding sequence motifs in regulatory regions. American Banker 2001,29:2607-2618. 5. IaconoM, Villa L, Fortini D, Bordoni R, Imperi F, Bonnal RJP, Sicheritz-Ponten T, DeBellis G, Visca P, Cassone A, Carattoli A:Whole-genomepyrosequencing of an epidemic multidrug-resistant Acinetobacter baumanniistrain belonging to the European clone II group. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 2008,52:2616-2625. |
|
來(lái)自: 追著天使拔毛 > 《待分類(lèi)》